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密度梯度分离 > 即用型分离液

猴  外周血  白细胞  

猴外周血白细胞分离液试剂盒

品牌:天津灏洋/TBD点击下载说明书

储存:常温保存,有效期2年。启封后置常温保存

货号规格价格货期
WBC1078H200mL/KIT750  638现货

详细说明


【包装规格】
200ml/Kit
【产品组成】 
为方便广大用户使用,试剂内容如下:

 
名称
产品编号
规格
A
人&各种动物外周血白细胞分离液
 
200ml
B
样本液 (赠品)
2010C1119
200ml
C
清 洗 液 (赠 品 )
2010X1118
200ml
D
红 细 胞 裂 解 液 (赠 品 )
NH4CL2009
100ml
D
说明
 
1

【实验前准备】
1.    适用仪器
最大离心力可达 1200g 的水平转子离心机。
(离心机使用时调整为慢升慢降(具体参数请咨询离心机厂家)建议升速(指开始启动→达 到设定离心力)的时间、降速(指设定离心时间完成→机器完全停止)时间均控制在 3 分钟 左右。)
2.    抗凝剂的选择 在动物实验采血时,很多实验者选择医用真空采血管获得抗凝血,医用采血管中的抗凝剂只考虑血浆质量,但不利于高纯度细胞分离实验(或必须使用枸橼酸钠的医用真空抗凝采血管)
为此,天津灏洋特别开发出专用实验动物抗凝剂及抗凝管专用于细胞分离,改变使用普 通采血管获得抗凝血分离效果不佳,提取率及纯度低下的不良结果。

1
TBDTM 细胞分离专用抗凝剂
TBDTM-0050
100ml
2
TBDTM-0200
200ml
3
TBDTM-0500
500ml
4
TBDTM 实验动物一次性使用负压采 血管(随试剂盒附赠 5 )
TBDTM-0001
5ml/

3.    目的细胞最佳分离时间
血液离体后 2 小时内。如达不到 2 小时内分血条件,请务必于 4 小时内进行分血步骤,超过 4 小时很难顺利进行分离。

2
2-4
4-6
细胞活性下降,分离效果不佳
6
分离效果极差,直至分离不出细胞

4.    分离液的使用环境
a. 分离液需常温(37℃-15℃)避光保存,严禁冷藏冷冻保存;
b. 使用时严格遵守无菌操作规范(超净工作台或生物安全柜内),并在 18℃-22℃环境温 度下进行操作,20℃条件下分离效果最佳。超出此温度范围,有可能使分离液密度发生 改变,造成分离效果不佳。
5.    无菌离心管

1
无菌硅化离心管/10ml(随试剂盒附赠 5 )
TUB2015
100 /
2
PBMC 高效离心管/50ml
601001
20 /
3
PBMC 高效离心管/15ml
601002
5 /

6.    参考值(目的细胞参考范围)
本试剂盒可保证目的细胞的提取率大于    80%,不是纯度。如需获得高纯度目的细胞, 请配合免疫磁珠分选。本试剂盒可减少磁珠的使用量,减少成本。
【检验方法】
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃(试剂需要复温。夏季 20℃, 冬季 25℃。)的条件下进行。
血液样本需要稀释时,实验方法如下:
稀释方法:1 份的 PBS 或样本稀释液(产品编号:2010C1119)加 2 份的血液进行稀释(PBS:抗凝血=1:2); 注:稀释液要求:用不含钙镁离子的缓冲液或培养基进行血液稀释。
各种规格离心管的使用方法(推荐最佳方法) 
取一支无菌离心管,加入分离液,后缓慢加入血液样本或新鲜抗凝血。血液样本或 新鲜抗凝血小心加于分离液液界面之上。(若采血量较少,需小量分离,分离液的量不 得少于 3ml,抗凝血量在 0.2-3ml 之间)
1.15ml 离心管(包括高效离心管):
A. 最佳比例:5ml 分离液+ 4ml 稀释过的血液;
B. 最佳离心条件:20℃环境下,500g 离心 25min。
注:离心后,两种情况均正常,均可以接受。取出全部(一层或两层)白细胞即可。

2.50ml 离心管(包括高效离心管):
A. 最佳比例:20ml 分离液+ 20ml 稀释过的血液; B. 最佳离心条件:20℃环境下,650g 离心 30min。
注:离心后,两种情况均正常,均可以接受。取出全部(一层或两层)白细胞即可。

未经稀释的抗凝血分离方法(细胞培养、或需保存血浆推荐用此方法): 3.使用 15ml 离心管(或 15ml 高效离心管)
A. 15ml 普通离心管最佳比例:5ml 分离液+ 5ml 抗凝血;
B. 15ml 高效离心管最佳比例:4ml 分离液+ 5ml 抗凝血; C. 最佳离心条件:20℃环境下,500g 离心 25min。
注:离心后,两种情况均正常,均可以接受。取出全部(一层或两层)白细胞即可。

4.使用 50ml 离心管(或 50ml 高效离心管)
A. 50ml 普通离心管最佳比例:20ml 分离液+ 20ml 抗凝血; B. 50ml 高效离心管最佳比例:15ml 分离液+ 20ml 抗凝血; C. 最佳离心条件:20℃环境下,600g 离心 30min。
注:离心后,两种情况均正常,均可以接受。取出全部(一层或两层)白细胞即可。

实验后续方案
1. 离心后,离心管中由上至下分为五层。第一层为血浆层(稀释液层)。第二层为环状乳 白色白细胞层。第三层为环状乳白色白细胞层。第四层为透明分离液层。第五层为红细 胞层。
注:离心管可能分为四层,第二层和第三层可能混淆在一起,全部取出即可。
2. ①小心吸取血浆层(稀释液层)转移到新离心管 A 中。
②小心吸取离心管中的第一层环状乳白色白细胞层转移到离心管 B 中
③小心吸取离心管中的第二层环状乳白色白细胞层转移到离心管 B 中。
3. 向含有(人&各种动物)白细胞的离心管 B 中,加入 5-10ml 清洗液(产品编号:2010X1118), 混匀细胞。 
4. 250g,离心 10min。弃去上清。
5. 用吸管吸取 5ml 清洗液(产品编号:2010X1118)重悬所得细胞。
6. 250g,离心 10min,弃去上清。
重复清洗两次,弃去上清,用  0.5ml  清洗液(产品编号:2010X1118)或根据下一步实验要 求加入相对应液体,重悬所得细胞。
分离图例

【分离过程中可能出现的情况及处理方案】
情况一:白细胞层混杂红细胞
1. 吸取有红细胞混杂的白细胞层。
2. 取 15 毫升离心管加入红细胞混杂的白细胞层,根据红细胞残余数量酌情加入 5-8 倍红 细胞裂解液。
a. 如有红细胞混杂则加入适量红细胞裂解液(产品编号:NH4CL2009)将红细胞裂解(具 体方法见“红细胞裂解液使用说明”)即得目的细胞。
b. 参考红细胞裂解液说明书操作。少时多次裂解后获得白细胞。

【注意事项】
1. 本实验最好不使用高聚合材质(如聚苯乙烯)的塑料制品,应使用无静电、低静电离心 管及未经碱处理过后的玻璃制品,因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会 变成毛面,影响细胞分离效果。
2. 分离液用量大于稀释后血液样本时,分离效果更佳。
3. 不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。稀释液要求:不含钙镁离子的缓冲液或培养基。 血液样本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。
4. 如实验后细胞得率或活性过低,请联系技术支持。
【储存条件及有效期】
常温保存,有效期  2    年。本品易感染细菌,需无菌条件操作。无菌条件下操作,启 封后置常温保存。如   4℃保存,本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。
【参考值(参考范围)】 本实验白细胞提取率及大于 80%。
下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例,用户可适当进行参考。

 

 
红细胞
白细胞
血小板
含量(个/L)
(4.0-5.5)×1012
(4.0-10.0)×109
(1.0-3.0)×1011
中性粒细胞
淋巴细胞
单核细胞
50%-70%
20%-40%
3%-8%

【可能存在的问题及解决方法】
1.    由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示:

出现情况
出现原因
建议解决方案
离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层
转速过小或离心时间过短
适当增减转速
离心后目的细胞存在于分离液中
转速过大或离心时间过长
离心后白环层弥散
细胞密度过大
调整细胞密度
离心后白环层太浅或看不见
细胞密度过小

2.    离心机离心力、转速、半径的换算方法

3.    本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心,其密度与温度、大气压等密切相关。不同地区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时,恒定离 心时间,对离心转速进行调整。
4.    本分离液依照国际标准,全部使用药用级原料,性能指标与国产同类产品略有不同,可 能出现红细胞沉降不完全的情况,可以适当加大离心转速。
注:在对离心条件进行调整时,离心转速的加减以  50-100g    为基数,直至达到最佳分离效果, 离心力最小不得小于 400g,最大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。

备注:TBD0031SOP,2023.0107-3