Cedarlane 分离液protocol汇总(上)

发布:2024-02-17  更新:2024-02-17

Cedarlane 公司起步于加拿大南部,现已在生命科学行业发展成为一家跨国公司。Cedarlane 为全球客户提供服务,在加拿大伯灵顿和美国北卡罗来纳州伯灵顿设有两个完善的仓库,提供各种抗体,不同种属分离液,补体和淋巴细胞分离柱等产品。

本篇推文小编将整理出Cedarlane分离液的使用说明,供各位老师参考。

Part1:Lympholyte®-H Cell Separation Media (Human):

Lympholyte®-H是一种密度梯度分离介质,专门设计用于从人外周血和脐带血中分离淋巴细胞和单核细胞。

注意:使用前充分摇晃混匀,静止2-3min,待气泡消失后试用。(室温条件下使用分离液,分离液密度会随温度的变化而发生改变)

 样本制备可使用无血清培养基,减少样本粘度,更利于分离。

操作步骤:

1.在含有抗凝血剂的试管中收集人血;

2.用等量培养基1:1稀释血液;

3.根据不同的方法进行分离:

方法A:

在离心管中加入3 mL Lympholyte®-H;

使用移液管,小心地将6 mL稀释的血液铺在Lympholyte®-H上,在液面上尽可能少地混合(图A);

由于Lympholyte®-H的密度比细胞悬液更大,因此将形成一个明显的界面(图C)。

 方法B:

①在离心管中加入6 mL稀释后的血液。将一个大的(23厘米)移液管放置到试管的底部(图B);

②慢慢地向移液管中加入Lympholyte®-H,重力使其在稀释的血液下分层;

③继续处理,直到3mL Lympholyte®-H在稀释的血液下分层。由于Lympholyte®-H比细胞悬液密度更大,因此会形成明显的界面(图C);

4.在室温下,以800g离心20分钟;

5.离心后,界面上将有一个明显的淋巴细胞层(图D)。使用移液管,小心地将细胞吸出,并转移到一个新的离心管中;

6.用培养基稀释转移的细胞,以降低溶液的密度。800g离心10分钟,沉淀淋巴细胞,然后弃用上清液;

Note:如果需要去除血小板,可在这一步进行操作:

方法A

A.加入0.5 mL缓冲液和50 uL凝血酶,然后轻轻重悬细胞;

B.用缓冲液补足10mL,并充分混合;

C.非常缓慢地(100g)离心细胞3分钟;血小板会聚集并沉淀在底部;

D. 取出上清液(包含细胞),放入另一个试管中,留下聚集的血小板。

方法B

A.800 g离心1分钟,沉淀细胞;

B.倒出上清液,用缓冲液重悬细胞,重复2次;

C.此时会观察到,当血小板被移除时,产生的上清液会变得更加清晰。

7.在进一步处理之前,在培养基中清洗淋巴细胞2-3次(在这个阶段可以使用含有血清的培养基)。

产品链接:http://www.shanjin.com.cn/product/26.html

Part2:Lympholyte®-M Cell Separation Media (Mouse):

Lympholyte®-M是一种密度分离介质,专门设计用于从小鼠淋巴样细胞悬液中分离活的淋巴细胞。

注意:使用前充分摇晃混匀,静止2-3min,待气泡消失后试用。(室温条件下使用分离液,分离液密度会随温度的变化而发生改变)

样本制备可使用无血清培养基,减少样本粘度,更利于分离。

 1.用推荐的方法和培养基制备淋巴细胞悬液。

建议的方法:

其他组织:彻底匀浆,获得干净的悬浮液

2.将细胞浓度调整至每毫升最多2 x 107个有核细胞;

Note:如果细胞悬液中含有大量的碎片或红细胞,调整细胞浓度为1.0 x 107个细胞/mL,可得到更干净的分离。

3.根据不同的方法进行分离:

方法A:

①在离心管中加入5 mL Lympholyte®-M;

②使用移液管,小心地将5 mL的细胞悬液铺在Lympholyte®-M上,在界面上尽可能少地混合(图A);

③由于Lympholyte®-M的密度比细胞悬液更大,因此将形成一个明显的界面(图C)。

方法B:

①在离心管中加入5 mL细胞悬液。将一个大的(23厘米)移液管放置到试管的底部(图B);

②慢慢地将Lympholyte®-M加入移液管中,重力将其置于细胞悬液下。继续处理,直到5 mL Lympholyte®-M在细胞悬液下分层;

③由于Lympholyte®-M比细胞悬液密度更大,因此将形成一个明显的界面(图C)。

4.在室温下,1000-1500g离心20分钟;

5.离心后,在界面上将有一个明显的淋巴细胞层(图D)。用移液管,小心地将细胞从界面上吸出,并转移到一个新的离心管中;

6.用培养基稀释分离的细胞,800g离心10分钟,沉淀淋巴细胞,弃上清;

7.将淋巴细胞在培养基中清洗2-3次,随后进行进一步处理。

产品链接:http://www.shanjin.com.cn/product/29.html

Part3:Lympholyte®-Rat Cell Separation Media (Rat):

Lympholyte®-Rat是一种密度分离介质,专门设计用于从大鼠淋巴细胞悬液中分离活的淋巴细胞。

注意:样本制备可使用无血清培养基,减少样本粘度,更利于分离。

1.用推荐的方法和培养基准备一个淋巴细胞悬液。

建议的方法:

其他组织:彻底匀浆,获得干净的悬浮液。

2.将细胞浓度调整为每毫升最多2 x 107个有核细胞。

注意:如果细胞悬液中含有大量的碎片或红细胞,如果细胞浓度设置为1.0 x 107个细胞/mL,可得到更干净的分离。

3.根据不同的方法进行分离:

方法A:

①向离心管中加入5 mL Lympholyte®-Rat;

②使用移液管,小心地将5 mL细胞悬液铺在Lympholyte®-Rat上,在界面上尽可能少地混合(图A);

③由于Lympholyte®-Rat的密度比细胞悬液更大,因此将形成一个明显的界面(图C)。

方法B:

①在离心管中加入5 mL细胞悬液。将一个大的(23厘米)移液管放置到试管的底部(图B);

②慢慢地将Lympholyte®-Rat加入移液管中,重力将其置于细胞悬液下。继续直到5 mL Lympholyte®-Rat在细胞悬液下分层;

③由于Lympholyte®-Rat比细胞悬液密度更大,因此将形成一个明显的界面(图C)。

4.在室温下,1000-1500g离心20分钟;

5.离心后,在界面上将有一个明显的淋巴细胞层(图D)。使用移液管,小心地将细胞从界面上吸出,并转移到一个新的离心管中;

6.用培养基稀释重悬细胞。800g离心10分钟,沉淀淋巴细胞,然后弃用上清液;

7.在进一步处理之前,在培养基中清洗淋巴细胞2-3次(现在可以使用含有血清的培养基)2-3次。

产品链接:http://www.shanjin.com.cn/product/32.html

译自:厂家说明书

转自(有修改):https://mp.weixin.qq.com/s/8MFVkaZ3BX0pPj0wLL8M4A